2005年3月，我县某养鸡专业户饲养的1500只艾维茵肉鸡于25日龄时发生一起传染病，导致大批鸡死亡，造成严重的经济损失。经过现场调查和实验室诊断，确诊该病为鸡巴氏杆菌病。采取综合防治措施后，病情很快得到了控制。现报道如下。
1 发病情况
本鸡群按常规饲养管理，饲养方式是网上平养，按当地常发病进行了免疫接种，但未接种禽霍乱疫苗。于25日龄时出现病情，当夜死亡17只，以后每天均有20只左右的死亡，用庆大霉素、土霉素拌料、饮水治疗3天，病情未得到有效控制，且不断加重，因而前往我站禽病门诊求治。
2 临床症状
部分病鸡没有任何临床症状表现就突然死亡，特别是白天未见异常表现，但在夜间死亡。大部分病鸡精神沉郁，食欲减退或绝食，饮欲增加;垂头缩颈，两翅下垂，羽毛松乱，严重时呼吸困难，死前张口呼吸。有的病鸡口鼻有浆液性、黏液性分泌物流出;鸡群中许多鸡表现摇头，鸡冠、肉髯呈暗红色或青紫色，排灰绿色或灰白色稀粪，体温升高到42～43℃，最后发生痉挛而死亡，多数病程1～3天。
3 剖检变化
病鸡腹膜、皮下组织及腹部脂肪小点出血;心包内积有不透明毖黄色液体，心冠脂肪出血明显;肺瘀血和出血;肝脏肿大1～2倍，质脆，呈黄棕色，表面有灰白色针尖状坏死点;脾肾充血、肿大，质地变软;肌胃出血显著，肠道尤其是十二指肠呈卡他性出血性肠炎，肠系膜出血，肠内容物含有血液;气囊和肠管表面有黄色干酪样渗出物。
4 实验室检查
4.1 涂片镜检 采取典型病例的心血、肝脾组织涂片或触片，分别经革兰氏和瑞氏染色，置油镜下观察，瑞氏染色可见一定数量的两极着色深、中间着色浅的球杆菌;革兰氏染色为阴性杆菌。
4.2 细菌分离培养 按常规无菌操作技术取病死鸡的肝、脾组织，分别接种于鲜血琼脂平板培养基、麦康凯琼脂平板培养基、肉汤培养基，置37℃恒温箱中培养24～48h后观察。在鲜血琼脂培养基上可见到2～3mm大小的光滑、隆起、灰白色、半透明、露珠样不溶血的小菌落;在麦康凯培养基上未见到细菌生长;在肉汤培养基中出现轻度混浊，管底有沉淀，表面有灰白色菌环。取培养物涂片、革兰氏染色，镜检可见两端钝圆、两极浓染的卵圆形小球杆菌。
4.3 生化试验 取分离菌进行生化试验，结果不液化明胶;能分解葡萄糖、果糖、蔗糖、甘露醇，但产酸不产气;不发酵乳糖、山梨醇、鼠李糖和木糖;尿素、M.R、V-P试验均为阴性，靛基质阳性。符合多杀性巴氏杆菌的生化特征。
4.4 动物实验 将分离纯化的细菌培养18h后，用生理盐水洗下，分别接种小白鼠和健康鸡，同时设生理盐水对照组。皮下注射4只小白鼠，每只0.2ml， 24h后全部死亡，涂片镜检细菌同上，对照组存活;接种鸡4只，其中2只肌肉注射0.5ml/只，另2只肌注1ml/只，48h后全部死亡，剖检死亡鸡呈急性败血症变化，肝、脾、肾充血肿大，肠道出血，染色镜检，同接种细菌。
4.5 药敏试验 按常规纸片法对分离菌进行药敏试验，结果该菌对恩诺沙星、环丙沙星、诺氟沙星、林可霉素高敏;对土霉素、红霉素中敏;对卡那霉素、青霉素、链霉素、庆大霉素低敏。
5 防治措施
5.1 在饲料中拌入敏感药物 每千克饲料中加入100mg恩诺沙星混饲，重症不采食者可按治疗量肌注林可霉素，每天2次，连用3天。
5.2 对假定健康鸡群注射灭活菌苗 取本场病鸡新鲜肝脏，用组织匀浆器将肝组织打碎，生理盐水做10倍稀释，纱布过滤，加入0.2%福尔马林充分混匀，经37℃24h处理，期间每隔4h摇动一次。腹腔注射小白鼠作动物安全试验，0.3ml/只，观察无死亡。该场鸡皮下注射1ml/只。
5.3 对病鸡舍严格隔离 切断人员及其所有用具的交互来往和使用，清除杂物，集中烧毁。鸡舍周围环境用2%的氢氧化钠溶液消毒，鸡舍内用0.1%百毒杀进行带鸡消毒，每天一次。
5.4 病死鸡和淘汰鸡集中深埋 经上述方法综合处理后，从第3天开始死亡数剧减，第5天停止死亡，第7天已完全控制病情。
6 讨论
经过调查发病情况、临床症状和病理剖检变化、实验室检查确诊本病为鸡巴氏杆菌病。
鸡巴氏杆菌病的治疗一般单纯采用抗生素治疗，虽能控制病情，但疗程长，根据我们的经验一般在5～7天后能恢复正常。如同时采用本场病死鸡中分离出的鸡多杀性巴氏杆菌制成的灭活菌苗，则效果好，能使鸡群较快地恢复健康，缩短病程，一般3～5天即可控制病情。
本病例未免疫禽霍乱疫苗，这可能是本病发生的一个主要原因。
多杀性巴氏杆菌是体内常在菌，当机体抵抗力下降时易发病，故要加强饲养管理。特别要搞好卫生消毒工作，减少应激。要做好药物预防工作，采用抗生素预防时往往因误用了不敏感的药物而导致预防失败。根据我们的临床经验表明，采用本场病死鸡中分离出的鸡多杀性巴氏杆菌制成的灭活菌苗预防，能获得较好效果。